1 引言(Introduction)

　　生物膜是由附著于固體載體表面的微生物和其自身分泌的胞外聚合物(EPS)所形成的結(jié)構(gòu)性微生物群落(Costerton et al., 1999).有害生物膜的形成會(huì)給很多領(lǐng)域帶來(lái)不利影響, 如醫(yī)療器械表面的生物膜會(huì)造成病人感染(Zodrow et al., 2012), 飲用水管網(wǎng)污染生物膜會(huì)造成管道腐蝕及水污染(Percival et al., 1999;Shaw et al., 2014), 生物膜還會(huì)造成凈水設(shè)備膜材料表面污染(Yu et al., 2012), 因此, 如何有效抑制有害生物膜的形成成為很多領(lǐng)域面臨的嚴(yán)峻挑戰(zhàn).

　　以往人們采用傳統(tǒng)的殺菌/抗菌劑通過(guò)殺死微生物細(xì)胞來(lái)抑制生物膜的形成(夏金蘭等, 2004).在這些傳統(tǒng)的抗菌劑中, 氯是目前世界上使用最廣泛的飲用水消毒劑, 廣泛用于飲用水處理和輸配系統(tǒng)中(Kim et al., 2009).銀離子和納米銀是應(yīng)用廣泛、殺菌效果優(yōu)異的無(wú)機(jī)非金屬殺菌劑(Rai et al., 2009).然而, 長(zhǎng)期使用這些傳統(tǒng)殺菌/抑菌劑往往會(huì)造成細(xì)菌耐藥性的增加.

　　近年來(lái)有研究發(fā)現(xiàn), 一些信號(hào)小分子物質(zhì)參與生物膜形成與解體過(guò)程的調(diào)控(張志剛等, 2011).這些小分子通過(guò)非殺菌機(jī)制抑制生物膜, 因此, 不會(huì)產(chǎn)生細(xì)菌耐藥性的問(wèn)題.例如, 雙(3-氨基丙基)胺能夠直接地、特異性地和EPS中的胞外多糖發(fā)生反應(yīng), 從而抑制生物膜的形成(Si et al., 2014).香蘭素通過(guò)抑制N-�；�-高絲氨酸內(nèi)酯(N-acyl-homoserine lactone, AHL, acyl-HSL)來(lái)干擾細(xì)菌的群體感應(yīng)(Quorum sensing, QS)系統(tǒng), 從而抑制生物膜的形成(Ponnusamy et al., 2009).溴代呋喃酮通過(guò)和AHLs競(jìng)爭(zhēng)受體蛋白, 或干擾呋喃酰硼酸二酯(Furan acyl boric acid ester, autoinducer-2, AI-2)來(lái)干擾細(xì)菌的QS系統(tǒng), 從而抑制生物膜的形成(Jang et al., 2013; Shetye et al., 2013).

　　目前, 利用傳統(tǒng)殺菌劑抑制單一純菌生物膜形成的研究比較多, 而針對(duì)污水處理系統(tǒng)混合菌形成的復(fù)雜生物膜, 傳統(tǒng)殺菌劑及小分子物質(zhì)對(duì)其抑制效果尚不明確, 有待于深入研究.因此, 本研究選用銀和氯作為傳統(tǒng)抗菌劑, 選用雙(3-氨基丙基)胺、香蘭素和(Z-)-4-溴-5-(溴乙烯)-2(5H)-呋喃酮(BBF)作為小分子物質(zhì), 比較這些傳統(tǒng)抗菌劑和小分子對(duì)污水處理系統(tǒng)中混合菌生物膜形成的抑制效應(yīng), 篩選效果較好的傳統(tǒng)抗菌劑和小分子物質(zhì), 并通過(guò)測(cè)定傳統(tǒng)抗菌劑和小分子物質(zhì)對(duì)微生物生長(zhǎng)的影響, 分析其抑制混合菌生物膜形成的可能機(jī)理, 以期為生物膜污染控制方法提供一定的理論基礎(chǔ).

　　2 材料與方法(Materials and methods)2.1 化學(xué)試劑和微生物

　　雙(3-氨基丙基)胺和BBF購(gòu)于Sigma Aldrich (St. Louis, MO), 香蘭素購(gòu)自生工生物工程上海(股份)有限公司.雙(3-氨基丙基)胺、香蘭素和BBF的化學(xué)結(jié)構(gòu)見圖 1.雙(3-氨基丙基)胺和香蘭素溶于超純水, 實(shí)驗(yàn)過(guò)程中所用的超純水(電導(dǎo)率為18.2 MΩ·cm)由Milli-Q梯度系統(tǒng)(Millipore, Bedford, MA)生產(chǎn).BBF溶于純乙醇(99%)制得40 mg·L-1的BBF儲(chǔ)備液.

　　圖 1

　　圖 1雙(3-氨基丙基)胺(a)、香蘭素(b)和BBF (c)的化學(xué)結(jié)構(gòu)

　　混合菌取自北京清河污水處理廠的活性污泥.活性污泥首先用磷酸鹽緩沖溶液(PBS)沖洗3遍, 然后通過(guò)離心(5000 r·min-1)收集, 將收集的活性污泥重懸于配置的模擬廢水中, 制備混合菌菌懸液(100 mg·L-1, 大約108 CFU·mL-1).模擬廢水成分為(mg·L-1)：COD(以葡萄糖計(jì)算) 825, NH4Cl 192, KH2PO4 35.1, NaCl 100, MgSO4 100, CaCl2 10.

　　2.2 不同傳統(tǒng)抗菌劑和小分子物質(zhì)對(duì)混合菌生物膜形成的抑制作用

　　為研究不同傳統(tǒng)抗菌劑和小分子對(duì)生物膜形成的抑制作用, 選擇銀和氯作為傳統(tǒng)抗菌劑, 雙(3-氨基丙基)胺、香蘭素和BBF作為小分子.首先在12孔板的每個(gè)孔內(nèi)加入3 mL上述制備好的混合菌菌懸液, 混合菌菌懸液中分別含有不同濃度的上述抗菌劑和小分子.其中, Ag+的最終濃度分別為0.01、0.05、0.1、1、10 mg·L-1, 有效氯的最終濃度分別為0.01、0.1、1、10、20 mg·L-1, 雙(3-氨基丙基)胺的最終濃度分別為100、500、1000、2000 μmol·L-1, 香蘭素的最終濃度分別為0.1、1、10、100、200 mg·L-1, BBF的最終濃度分別為1、10、20 mg·L-1.Ag+、氯、雙(3-氨基丙基)胺和香蘭素的對(duì)照組加入等量的超純水, BBF的對(duì)照組加入等量的純乙醇.然后將12孔板置于30 ℃的培養(yǎng)箱內(nèi)靜止培養(yǎng)24 h.培養(yǎng)結(jié)束后, 將12孔板從培養(yǎng)箱內(nèi)取出, 上面附著的生物膜量采用結(jié)晶紫染色法進(jìn)行定量, 方法參考Xiong等(2013)的結(jié)晶紫染色法：首先將12孔板用PBS溶液沖洗3遍去除上面松散結(jié)合的浮游細(xì)菌, 然后通過(guò)干燥固定上面的生物膜, 生物膜固定后用500 μL、0.1%的結(jié)晶紫染色30 min, 然后用PBS將多余的未與生物膜結(jié)合的結(jié)晶紫洗干凈.最后, 用1 mL純乙醇將與生物膜結(jié)合的結(jié)晶紫洗脫30 min.取200 μL洗脫液加入到96孔板內(nèi)通過(guò)酶標(biāo)儀(Tecan Infinite M200, 瑞士)測(cè)定OD600.實(shí)驗(yàn)組的相對(duì)生物膜量為與對(duì)照組相比的百分?jǐn)?shù)(對(duì)照組為100%).

　　2.3 銀和雙(3-氨基丙基)胺對(duì)混合菌生長(zhǎng)曲線的影響

　　為了研究不同濃度的銀和雙(3-氨基丙基)胺對(duì)微生物生長(zhǎng)的影響, 將3 mL包含不同濃度的Ag+和雙(3-氨基丙基)胺的混合菌菌懸液加入10 mL離心管內(nèi), 然后將離心管置于30 ℃、180 r·min-1的條件下培養(yǎng), 在不同時(shí)間內(nèi)測(cè)定懸浮態(tài)混合菌的OD600.

　　2.4 統(tǒng)計(jì)分析

　　所有實(shí)驗(yàn)均有3組平行數(shù)據(jù).數(shù)據(jù)進(jìn)行方差分析(ANOVA), p<0.05被認(rèn)為具有顯著性, 具有顯著性差異的數(shù)據(jù)用*表示.

　　3 結(jié)果與討論(Results and discussion)3.1 不同傳統(tǒng)抗菌劑對(duì)混合菌生物膜形成的抑制效率

　　銀對(duì)混合菌生物膜形成的抑制效應(yīng)見圖 2a.由圖可知, 0.01 mg·L-1的Ag+不能抑制混合菌生物膜的形成, 與對(duì)照相比, 0.05 mg·L-1的Ag+對(duì)混合菌生物膜形成的抑制率為23%.當(dāng)Ag+濃度繼續(xù)從0.1 mg·L-1增加到10 mg·L-1時(shí), 生物膜抑制率增加到70%左右, 并穩(wěn)定在該水平, 不再隨Ag+濃度的增加而增加.由圖 2b可知, 與對(duì)照相比, 0.01 mg·L-1的氯對(duì)生物膜抑制效率為23%;0.1 mg·L-1的氯對(duì)生物膜抑制效率為40%, 遠(yuǎn)低于該濃度下Ag+的抑制率(70%);當(dāng)氯濃度從0.1 mg·L-1增加到20 mg·L-1時(shí), 混合菌生物膜形成的抑制率在40%~53%之間, 沒(méi)有隨著氯濃度的增加而顯著性地增加.當(dāng)銀和氯的濃度增加到一定程度時(shí), 其對(duì)生物膜形成的抑制率都不再繼續(xù)增加, 保持相對(duì)穩(wěn)定.這可能是由于微生物以聚集形式存在的生物膜會(huì)對(duì)其內(nèi)部的細(xì)菌起保護(hù)作用, 相比懸浮態(tài)微生物具有更強(qiáng)的殺菌劑耐性;另外, 混合菌中一些耐銀和耐氯微生物的存在也增強(qiáng)了其對(duì)殺菌劑的抗性(Silver et al., 2006; Zhang et al., 2013).

　　圖 2

　　圖 2不同濃度的銀(a)和氯(b)對(duì)混合菌生物膜形成(24 h)的影響(*表示與對(duì)照相比具有顯著性差異(p<0.05), 誤差棒代表 3組平行數(shù)據(jù)之間的標(biāo)準(zhǔn)偏差, 下同)

　　總體來(lái)看, 同等濃度下Ag+對(duì)混合菌生物膜形成的抑制率要高于氯, Ag+對(duì)混合菌生物膜形成的最高抑制率可達(dá)到70%, 優(yōu)于氯的抑制作用(53%).因此, 相比于氯, Ag+對(duì)本研究中所采用的活性污泥混合菌生物膜形成的抑制效率更高.

　　3.2 不同小分子物質(zhì)對(duì)混合菌生物膜形成的抑制效率

　　雙(3-氨基丙基)胺是一種聚胺類小分子物質(zhì), 其對(duì)生物膜形成的抑制作用與目標(biāo)菌種有著密切關(guān)系(Nesse et al., 2015).關(guān)于雙(3-氨基丙基)胺抑制生物膜形成的相關(guān)機(jī)理, 有研究發(fā)現(xiàn)其能直接地、特異性地與微生物聚集體中的胞外多糖發(fā)生反應(yīng), 通過(guò)不同于傳統(tǒng)抑菌/殺菌劑生物膜抑制機(jī)制, 抑制活性污泥生物膜的形成(Si et al., 2014).也有研究表明, 雙(3-氨基丙基)胺能夠干擾S. mutans的群體感應(yīng)系統(tǒng), 從而改變其生物膜中胞外多糖的結(jié)構(gòu)(Ou et al., 2017).本研究中不同濃度的雙(3-氨基丙基)胺對(duì)生物膜形成抑制的效應(yīng)見圖 3a, 隨著雙(3-氨基丙基)胺濃度的升高, 混合菌生物膜的附著量逐漸降低.與對(duì)照組相比, 100 μmol·L-1的雙(3-氨基丙基)胺不會(huì)抑制混合菌生物膜形成, 當(dāng)其濃度增加到500 μmol·L-1時(shí), 生物膜抑制率達(dá)到16%.當(dāng)雙(3-氨基丙基)胺的濃度增加到1000和2000 μmol·L-1時(shí), 生物膜的抑制率顯著增加到60%和68%.表明雙(3-氨基丙基)胺能夠有效抑制混合菌生物膜的形成, 在高濃度條件下的抑制效果更好.

　　圖 3

　　圖 3不同濃度的雙(3-氨基丙基)胺(a)、香蘭素(b)和BBF (c)對(duì)混合菌生物膜形成(24 h)的影響

　　香蘭素(4-羥基-3-甲氧苯甲醛)是一種小分子物質(zhì), 它可以作為信號(hào)分子抑制劑(Quorum sensing inhibitor, QSI)調(diào)控微生物聚集過(guò)程.香蘭素對(duì)混合菌生物膜形成的影響見圖 3b.當(dāng)香蘭素濃度從0.1 mg·L-1增加到1 mg·L-1時(shí), 生物膜抑制率維持在20%左右(p>0.05).當(dāng)香蘭素的濃度增加到1~100 mg·L-1時(shí), 生物膜的形成隨著香蘭素濃度的增加而逐步減少, 100 mg·L-1的香蘭素可以抑制37%混合菌生物膜的形成.當(dāng)香蘭素的濃度繼續(xù)增加到200 mg·L-1時(shí), 生物膜的形成量不再顯著性減少(p<0.05), 達(dá)到相對(duì)穩(wěn)定的狀態(tài).香蘭素作為一種QSI, 可以顯著抑制短鏈(C4-HSL和3-Oxo-C8-HSL)和長(zhǎng)鏈AHL的活性, 從而阻礙細(xì)菌在基底表面的粘附及生物膜的形成(Ponnusamy et al., 2009).有研究報(bào)道, 香蘭素能夠顯著減少反滲透膜上生物膜的厚度、生物量和總蛋白量(Kappachery et al., 2010).也有研究表明, 香蘭素能夠減少活性污泥生物膜EPS中的多糖和蛋白, 但對(duì)eDNA不起作用(Si et al., 2017).本研究結(jié)果說(shuō)明香蘭素可以顯著抑制混合菌生物膜的形成, 但其抑菌效果不如雙(3-氨基丙基)胺.

　　BBF作為一種溴代呋喃酮, 由于其結(jié)構(gòu)和AHLs相似, 可以通過(guò)和AHLs競(jìng)爭(zhēng)受體蛋白(LuxR家族蛋白)來(lái)干擾細(xì)菌的QS系統(tǒng)(Shetye et al., 2013).另外, 一些溴代呋喃酮還能夠通過(guò)干擾廣泛存在于革蘭氏陽(yáng)性細(xì)菌和革蘭氏陰性細(xì)菌中的AI-2來(lái)抑制生物膜的形成(Jang et al., 2013).相關(guān)研究還發(fā)現(xiàn), 溴化呋喃酮能夠抑制牙齦卟啉單胞菌生物膜的形成, 而且不會(huì)影響浮游細(xì)菌的生長(zhǎng)(張利平等, 2011).因此, 選擇BBF來(lái)研究其對(duì)混合菌生物膜形成的抑制作用.由圖 3c可知, 當(dāng)BBF的濃度在1~20 mg·L-1之間時(shí), 其對(duì)混合菌生物膜形成的抑制率穩(wěn)定在11%~18%, 且各處理間沒(méi)有顯著性差異(p>0.05).雖然與對(duì)照組相比, 1~20 mg·L-1的BBF能夠顯著抑制混合菌生物膜的形成(p<0.05), 但得到的抑制率相比于雙(3-氨基丙基)胺和香蘭素較低.因此, 需要進(jìn)一步探討B(tài)BF在混合菌生物膜控制中的應(yīng)用方式, 以提高其對(duì)混合菌生物膜的抑制效率.具體聯(lián)系污水寶或參見http://wlmqsb.com更多相關(guān)技術(shù)文檔。

　　3.3 銀和雙(3-氨基丙基)胺對(duì)微生物生長(zhǎng)的影響

　　上述研究表明, 在傳統(tǒng)抗菌劑中, 銀對(duì)混合菌生物膜形成的抑制效果優(yōu)于氯, 而在小分子中, 雙(3-氨基丙基)胺的抑制效果最好.因此, 本文研究了不同濃度的銀和雙(3-氨基丙基)胺對(duì)混合菌生長(zhǎng)曲線的影響, 探討其抑制混合菌生物膜形成的可能機(jī)理.由圖 4可知, 銀和雙(3-氨基丙基)胺對(duì)混合菌生長(zhǎng)曲線的影響與其濃度有關(guān), 低濃度的銀(0.01 mg·L-1)可以促進(jìn)混合菌的生長(zhǎng), 0.05 mg·L-1的Ag+對(duì)混合菌的生長(zhǎng)沒(méi)有顯著影響, 高濃度的銀(0.1、1和10 mg·L-1)會(huì)顯著抑制混合菌的生長(zhǎng), 而且濃度越高, 抑制效果越顯著.1000 μmol·L-1以下的雙(3-氨基丙基)胺基本不會(huì)抑制懸浮狀態(tài)混合菌的生長(zhǎng), 所以其對(duì)混合菌生物膜的抑制是通過(guò)非殺菌機(jī)制來(lái)實(shí)現(xiàn)的.但高濃度(2000 μmol·L-1)的雙(3-氨基丙基)胺會(huì)顯著抑制混合菌的生長(zhǎng)曲線, 表明高濃度的雙(3-氨基丙基)胺能夠殺滅微生物, 可以通過(guò)殺菌機(jī)制來(lái)抑制生物膜的形成.

　　圖 4

　　圖 4不同濃度的銀(a)和雙(3-氨基丙基)胺(b)對(duì)混合菌生長(zhǎng)曲線的影響

　　4 結(jié)論(Conclusions)

　　1) 兩種傳統(tǒng)抗菌劑中, 銀對(duì)廢水處理系統(tǒng)混合菌形成生物膜的抑制效率要高于氯;高濃度的銀離子(>0.1 mg·L-1)通過(guò)殺菌機(jī)制抑制混合菌生物膜的形成, 可能會(huì)導(dǎo)致細(xì)菌產(chǎn)生耐藥性.

　　2)在3種小分子物質(zhì)中, 雙(3-氨基丙基)胺對(duì)生物膜形成的抑制效果最好, 明顯優(yōu)于香蘭素和(Z-)-4-溴-5-(溴乙烯)-2(5H)-呋喃酮(BBF).

　　3) 低濃度(<1000 μmol·L-1)的雙(3-氨基丙基)胺通過(guò)非殺菌機(jī)制抑制混合菌生物膜的形成, 可以避免傳統(tǒng)殺菌劑產(chǎn)生抗藥性的問(wèn)題.如何將小分子物質(zhì)和傳統(tǒng)抗菌劑有效耦合, 或者改變其作用方式, 進(jìn)一步提高生物膜抑制率, 有待于進(jìn)一步研究.(來(lái)源：環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào) 作者：武亞川)