飲用水安全直接關(guān)系到城鄉(xiāng)居民的身體健康及社會經(jīng)濟(jì)穩(wěn)定發(fā)展，所以國家高度重視飲用水安全問題，相繼發(fā)布了《全國城市飲用水安全保障規(guī)劃(2006-2020年)》、《城市供水水質(zhì)管理規(guī)定》、《水污染防治行動計(jì)劃》等一系列文件，修訂了《生活飲用水衛(wèi)生標(biāo)準(zhǔn)》并于2012年7月1日起在我國全面實(shí)施，飲用水安全保障力度不斷加大.針對目前我國原水微污染的水質(zhì)狀況，供水企業(yè)一方面通過改造和強(qiáng)化傳統(tǒng)工藝，并增加預(yù)處理或深度處理工藝，使出廠水質(zhì)達(dá)到新的標(biāo)準(zhǔn)，另一方面則通過強(qiáng)化消毒工藝和控制管網(wǎng)余氯量來保證管網(wǎng)水的微生物學(xué)指標(biāo)達(dá)標(biāo).
經(jīng)過工藝處理進(jìn)入管網(wǎng)的飲用水中的微生物并不能完全被滅活，一旦條件變化(余氯衰減，殘存的營養(yǎng)物質(zhì)濃度變化等)，有一部分就會在管網(wǎng)中繁殖和恢復(fù)活性，這其中還存在著活的但不可培養(yǎng)的微生物(viable but non-culturable, VBNC)，這些微生物無法通過細(xì)菌培養(yǎng)的方法[6]檢出. VBNC中如果存在致病菌，在適宜環(huán)境條件下復(fù)活并大量繁殖，則直接威脅到飲用水水質(zhì)安全.因此，快速、準(zhǔn)確地進(jìn)行管網(wǎng)水微生物的定量定性，是供水企業(yè)能夠迅速采取措施控制微生物生長繁殖，保證供水水質(zhì)衛(wèi)生安全的前提.近年來，國內(nèi)外研究者不斷采用新的細(xì)菌檢測方法對細(xì)菌進(jìn)行快速計(jì)數(shù)，取得了很好的效果.
為克服傳統(tǒng)培養(yǎng)方法計(jì)數(shù)結(jié)果偏低、培養(yǎng)時間長以及部分微生物無法檢出的局限性，本研究采用快速準(zhǔn)確且操作相對簡便的熒光顯微鏡直接鏡檢法，對配水管網(wǎng)水中的細(xì)菌進(jìn)行計(jì)數(shù)和觀察.本研究以活菌數(shù)占細(xì)菌總數(shù)的比值來表征試驗(yàn)管網(wǎng)水的整體細(xì)菌活性，并對飲用水中常見形態(tài)細(xì)菌以及整體細(xì)菌活性受余氯、溫度、濁度、流速等因素影響的變化進(jìn)行了分析，結(jié)果對快速預(yù)估配水管網(wǎng)中生物安全性風(fēng)險(xiǎn)具有一定意義，同時也有利于供水企業(yè)根據(jù)預(yù)估結(jié)果調(diào)整工藝參數(shù)、保障供水安全.
1 材料與方法1.1 試驗(yàn)管網(wǎng)與試驗(yàn)采樣
雖然試驗(yàn)管網(wǎng)與實(shí)際配水管網(wǎng)的環(huán)境條件存在一些差異，但是采用試驗(yàn)管網(wǎng)能夠根據(jù)試驗(yàn)需要來調(diào)節(jié)影響細(xì)菌生長的參數(shù)變化，更好地了解細(xì)菌數(shù)量和整體活性受多個因素影響的變化規(guī)律.為了模擬實(shí)際配水管網(wǎng)水中細(xì)菌的生長變化情況，按圖 1所示，采用PE管、閘閥、流量計(jì)、循環(huán)水箱及離心泵等管件與設(shè)備，在實(shí)驗(yàn)室搭建了模擬配水管網(wǎng).試驗(yàn)用水直接引自北方某市配水管網(wǎng).裝置啟動后，首先投加次氯酸鈉溶液使水中自由余氯的初始值接近實(shí)際水廠清水池出水的余氯值;其次通過試驗(yàn)用水的封閉循環(huán)來模擬飲用水在實(shí)際配水管網(wǎng)中的流動;最后在取樣點(diǎn)采樣進(jìn)行試驗(yàn).取樣點(diǎn)選在模擬管網(wǎng)主干管上的中點(diǎn)，以間隔一定時間的采樣分析結(jié)果，來模擬實(shí)際配水管網(wǎng)的沿程水質(zhì).本研究于2014年8月至2015年7月對選定取樣點(diǎn)進(jìn)行取樣，水樣按照標(biāo)準(zhǔn)方法采集后盡快送回實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行分析，并按照國家標(biāo)準(zhǔn)方法對研究需要的指標(biāo)進(jìn)行測定.
1.離心泵;2.止回閥;3.閘閥;4.取樣龍頭;5.密封與平衡裝置;6.加藥管;7.進(jìn)水管;8.排水管;9.循環(huán)水箱;10.管網(wǎng)示意
圖 1 模擬配水管網(wǎng)示意
1.2 儀器與藥品
總余氯與自由余氯：使用HACH46 700-001型總氯-余氯儀;HACH-DPD自由余氯測定藥劑，HACH-DPD總余氯測定藥劑.濁度：HACH2100AN型濁度儀.細(xì)菌總數(shù)和活菌數(shù)：使用Olympus-BX51型熒光顯微鏡，采用吖啶橙(acridine orange)染色鏡檢.
吖啶橙是技術(shù)相對成熟的熒光鏡檢染色劑.它能夠透過細(xì)胞膜，與細(xì)胞核內(nèi)的DNA和細(xì)胞質(zhì)內(nèi)的RNA結(jié)合，并在波長為436~490 nm的激發(fā)光的激發(fā)下發(fā)出熒光.它與DNA結(jié)合可發(fā)射出黃綠色或綠色熒光，與RNA結(jié)合可發(fā)出橙色至鮮紅色熒光.即使DNA在沒有活性的細(xì)胞內(nèi)，吖啶橙也能與其結(jié)合將其染色，因此可以用來計(jì)數(shù)細(xì)菌總數(shù).
1.3 試驗(yàn)方法
細(xì)菌總數(shù)計(jì)數(shù)采用吖啶橙染色直接計(jì)數(shù)法[15](acridine orange direct counts，AODC).水樣用無菌磨口玻璃瓶采集后迅速加入甲醛固定，甲醛最終含量2%.將0.5 mL含量為0.2%的吖啶橙(BBI公司)溶液加入10 mL固定后水樣中，染色1~2 min.染色后的水樣使用溶劑負(fù)壓過濾器以微孔濾膜(孔徑0.2 μm，直徑47 mm，黑色聚碳酸酯膜，Millipore公司)過濾.將過濾后的濾膜置于載玻片上并固定，用落射熒光顯微鏡觀察，計(jì)數(shù)發(fā)綠色或橙色熒光的菌體.顯微鏡光源為汞燈，激發(fā)光濾光片450~490 nm，光束分離濾光片510 nm，阻擋濾光片520 nm.隨機(jī)選取10個視野的計(jì)數(shù)結(jié)果取平均值，根據(jù)視野面積和過濾面積的比值計(jì)算出單位體積水樣中的細(xì)菌數(shù)量.
活菌數(shù)計(jì)數(shù)采用活菌直接計(jì)數(shù)法[16](direct viable counts，DVC-N.A).向10 mL水樣中加入最終含量為0.002%的萘啶酮酸(nalidixic acid, N.A, BBI公司)和最終含量為0.025%的酵母膏(上海生工生物工程公司)，25℃避光培養(yǎng)6 h后用甲醛固定.再將固定后的水樣按照AODC法直接鏡檢計(jì)數(shù)，視野中長大或變粗的菌體被認(rèn)為是活菌.
2 結(jié)果與分析2.1 細(xì)菌計(jì)數(shù)結(jié)果比較
加氯后在試驗(yàn)管網(wǎng)取水點(diǎn)取樣，隨著余氯不斷衰減取多組水樣，并從中選取4組水樣，分別使用R2A培養(yǎng)基平板計(jì)數(shù)和吖啶橙染色直接計(jì)數(shù)兩種不同方法對水樣中的細(xì)菌進(jìn)行計(jì)數(shù).每組水樣均取等量的6份，即每種計(jì)數(shù)方法對每組水樣平行測定3次，取計(jì)數(shù)結(jié)果的平均值.兩種方法對4組水樣中細(xì)菌的計(jì)數(shù)結(jié)果見表 1.使用R2A作為培養(yǎng)基的平板計(jì)數(shù)法得到水樣中的活菌數(shù)在100~102 cfu·mL-1，而吖啶橙染色熒光顯微鏡直接鏡檢計(jì)數(shù)法得到水樣中的活菌數(shù)在103~104 cells·mL-1，比使用R2A作為培養(yǎng)基的平板計(jì)數(shù)法高出1~3個量級，明顯高于培養(yǎng)法.直接鏡檢計(jì)數(shù)法不僅能夠計(jì)數(shù)活細(xì)菌，還能夠計(jì)數(shù)受損和死亡細(xì)菌數(shù)量，得到水樣中的細(xì)菌總數(shù)在104~105cells·mL-1.類似的試驗(yàn)在冬季也進(jìn)行了運(yùn)行，并與夏季運(yùn)行的結(jié)果對比.冬季的HPC-R2A法計(jì)數(shù)結(jié)果在100~102 cfu·mL-1，檢出量級更低，甚至有個別水樣未檢出.而鏡檢計(jì)數(shù)結(jié)果檢出的量級仍在103~104cells·mL-1.且鏡檢法能夠直觀地觀察到細(xì)菌的形態(tài)，有助于更好地掌握細(xì)菌的變化規(guī)律(見圖 2).
表 1 R2A培養(yǎng)法和AO染色鏡檢法細(xì)菌計(jì)數(shù)結(jié)果比較
圖 2 不同形態(tài)細(xì)菌
2.2 不同理化指標(biāo)下細(xì)菌數(shù)量和總體活性的變化2.2.1 不同余氯量下細(xì)菌數(shù)量和總體活性的變化
采用活菌數(shù)與細(xì)菌總數(shù)的比值來表征管網(wǎng)中細(xì)菌的整體活性.細(xì)菌數(shù)量和總體活性與余氯衰減的關(guān)系見圖 3.向循環(huán)水箱中投加次氯酸鈉溶液后，馬上開始取樣測定.測定活菌數(shù)為22 680 cells·mL-1(各形態(tài)活菌占活菌總數(shù)的比例見表 2)，活菌數(shù)占細(xì)菌總數(shù)的比例為15.12%.當(dāng)余氯濃度達(dá)到最大值時，活菌的數(shù)量開始減少.此時水樣中活菌數(shù)為21 088 cells·mL-1，活弧形菌所占比例顯著降低(見表 2)，在活菌比例最低時(達(dá)9.21%)，活菌中短桿形菌所占的比例較余氯濃度最大時提高了5.8%，而此時球形菌和長桿形菌所占比例變化不大，弧形菌所占比例降至為0(見表 2).隨著余氯的衰減，活菌所占比例不斷增大，而且活菌中桿形菌的數(shù)量增速更快(圖 4)，平均數(shù)量增速(從活菌比例最低至循環(huán)結(jié)束時間段內(nèi))為46 cells·(mL·min)-1，而球形菌和弧形菌僅為30 cells·(mL·min)-1和7 cells·(mL·min)-1.當(dāng)水中余氯濃度低于0.3 mg·L-1時，活菌在細(xì)菌總數(shù)中所占比例開始增大，最高可達(dá)到20.25%，遠(yuǎn)高于余氯濃度為0.52 mg·L-1時9.34%的活菌比例.
表 2 水循環(huán)中不同時刻各形態(tài)細(xì)菌所占比例
圖 3 整體細(xì)菌活性受余氯影響的變化
圖 4 低殘留余氯濃度水樣中的活菌
2.2.2 不同溫度下細(xì)菌數(shù)量和總體活性的變化
模擬管網(wǎng)用水來自以地表水為水源的市政管網(wǎng)，所以四季水溫相差較大，冬季的試驗(yàn)水溫一般低于11℃，而夏季的試驗(yàn)水溫一般高于19℃.分別選取每月平行試驗(yàn)中余氯約為0.55、0.30和0.00 mg·L-1的水樣，分析不同季節(jié)細(xì)菌數(shù)量和總體活性受水溫影響的變化規(guī)律(圖 5).在余氯低于0.3 mg·L-1時，活菌數(shù)占細(xì)菌總數(shù)的比值因?yàn)闇囟鹊牟煌嗖钶^大，可達(dá)2.48%.對比不同季節(jié)66份管網(wǎng)水樣的鏡檢結(jié)果，未投加次氯酸鈉時，夏季水樣中桿形菌占細(xì)菌總數(shù)的62.8%~68.3%，高于冬季的52.9%~66.7%，而在活菌比例最低時夏季試驗(yàn)水樣中桿形菌占細(xì)菌總數(shù)的45.1%~54.7%，低于冬季管網(wǎng)中的58.7%~62.6%，說明在水溫較高時，桿形菌對次氯酸鈉的耐受性變差.另外，在夏季水樣中存在許多活的短桿形菌(見圖 6)，是冬季水樣中少見的.
圖 5 整體細(xì)菌活性受不同月份水溫的影響
圖 6 夏季水樣中經(jīng)過培養(yǎng)的活短桿形菌
2.2.3 不同濁度下細(xì)菌數(shù)量和總體活性的變化
為了研究濁度與細(xì)菌數(shù)量之間的關(guān)系，取不同季節(jié)不同循環(huán)未投加消毒劑之前的試驗(yàn)循環(huán)水，樣品編號按濁度由小到大排列，分別測定了濁度和活菌數(shù)，結(jié)果見圖 7.濁度與活菌數(shù)之間的相關(guān)系數(shù)高達(dá)0.979 8.
圖 7 活菌數(shù)與濁度的相關(guān)性
余氯約為0.3 mg·L-1時不同濁度下的計(jì)數(shù)結(jié)果(圖 8)，濁度最大值2.28 NTU，最小值1.64 NTU，相差0.64 NTU;活菌數(shù)占細(xì)菌總數(shù)的比值相應(yīng)地相差2.95%.濁度超過2 NTU時，活菌數(shù)比例增大明顯.由于試驗(yàn)采用的是自建的管網(wǎng)，每次運(yùn)行前雖然對管網(wǎng)進(jìn)行沖洗，但難免會有少量的搭建管網(wǎng)時殘留的管材碎屑.另外，運(yùn)行前的沖洗突然改變了管網(wǎng)的水力條件，沖刷下了管壁附著的細(xì)菌及沉淀物質(zhì)，也增加了試驗(yàn)用水的濁度.并且，試驗(yàn)用水引自的管網(wǎng)是年代較遠(yuǎn)的傳統(tǒng)管材管網(wǎng)，其中的水自身濁度較高.上述原因造成了試驗(yàn)水濁度基本高于0.5 NTU.
圖 8 整體細(xì)菌活性受濁度的影響
2.2.4 不同流速下細(xì)菌數(shù)量和總體活性的變化
為了縮短研究時間，盡快取得管壁生物膜，所以試驗(yàn)管網(wǎng)在設(shè)計(jì)和運(yùn)行時均考慮到流速的問題，使實(shí)際運(yùn)行的流速低于經(jīng)濟(jì)流速.試驗(yàn)配水管網(wǎng)中水的流速通過每個管段上的閥門控制在0.4~1.7 m·s-1.被沖刷下來的生物膜會懸浮在水樣中，在染色過濾時被截留在微孔濾膜上.由圖 9可見被沖刷下的生物膜內(nèi)存在活菌.
圖 9 被沖刷下來的管壁生物膜
在封閉循環(huán)試驗(yàn)結(jié)束后，保持主干管流量為1 m3·h-1運(yùn)行(采用非循環(huán)方式)18 h，分別在試驗(yàn)管網(wǎng)始端管段的上游和下游龍頭取水樣(樣品1和2)，之后迅速旋該管段上下游閥門至開啟度最大，并同時在這兩個龍頭再取水樣(樣品3和4)，分別測定4個水樣中活菌數(shù)和細(xì)菌總數(shù)，測定結(jié)果見圖 10.可見流速的突然增大從管壁上沖刷下生物膜，引起了水中細(xì)菌數(shù)量的增多，尤其是活菌數(shù)量的增幅更大，導(dǎo)致水中整體細(xì)菌活性增強(qiáng).因此，盡量避免引起流速突變(如水錘等現(xiàn)象)，防止管網(wǎng)中流速突然增大，也是控制飲用水中細(xì)菌數(shù)量激增的有效措施.
圖 10 整體細(xì)菌活性受流速的影響
3 討論3.1 細(xì)菌計(jì)數(shù)方法的比較
瓊脂平板計(jì)數(shù)法(agar plate counts)是至目前國內(nèi)應(yīng)用最廣泛且使用時間最長的飲用水中異養(yǎng)菌的計(jì)數(shù)方法.近年來也有很多研究者使用R2A培養(yǎng)基進(jìn)行平板培養(yǎng)計(jì)數(shù)來克服受損菌體不能在營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基上正常生長的局限性，使計(jì)數(shù)結(jié)果更高.但是培養(yǎng)基為細(xì)菌提供的生長環(huán)境還是與飲用水系統(tǒng)的貧營養(yǎng)環(huán)境差異較大，使用培養(yǎng)方法檢測飲用水系統(tǒng)中的所有細(xì)菌還是難以獲得較為準(zhǔn)確的結(jié)果，有個別樣品還會因?yàn)橥坎紩r的操作不當(dāng)造成污染而得不到計(jì)數(shù)結(jié)果.并且使用HPC-R2A法培養(yǎng)，細(xì)菌生長緩慢，數(shù)量一般從培養(yǎng)的第4 d、第5 d開始才增多較快，那么要想得到準(zhǔn)確的計(jì)數(shù)結(jié)果，采用常規(guī)的7 d培養(yǎng)法是不夠的，不能使供水企業(yè)迅速地得到細(xì)菌數(shù)量超標(biāo)的信息并及時采取控制措施.雖然掃描電鏡使視野清晰，但是對于觀察前細(xì)菌的分離技術(shù)要求較高，且前處理時間也稍長，所以還多用于對觀察細(xì)菌形態(tài).利用流式細(xì)胞術(shù)、ATP方法、分子探針、基因芯片等測定飲用水中的微生物也能快速獲得相對準(zhǔn)確的計(jì)數(shù)結(jié)果，但是對操作人員的要求較高，也不能作為供水企業(yè)的首選.而熒光顯微鏡鏡檢法可以直接對水樣中的細(xì)菌進(jìn)行計(jì)數(shù)，對細(xì)菌的生長環(huán)境改變不大.而且熒光顯微鏡觀察計(jì)數(shù)十分快捷，從取樣至檢出只需30 min左右.顯微鏡直接鏡檢計(jì)數(shù)法快捷、穩(wěn)定、經(jīng)濟(jì)性好，是在實(shí)際應(yīng)用中對飲用水管網(wǎng)中細(xì)菌進(jìn)行快速計(jì)數(shù)的可行方法.
3.2 細(xì)菌數(shù)量和整體活性受理化指標(biāo)影響的變化規(guī)律3.2.1 細(xì)菌數(shù)量和整體活性受余氯影響的變化規(guī)律
由前述試驗(yàn)結(jié)果可知，在投氯的初始時刻，消毒劑中的有效成分還未完全對微生物產(chǎn)生作用，活菌的比例還很高.余氯濃度最大時，弧形菌比例較初始時刻大幅降低，而其它形態(tài)細(xì)菌比例變化沒有過于明顯，說明配水管網(wǎng)水中的大部分種屬的弧形菌對次氯酸鈉消毒劑的耐受力較桿形菌和球形菌弱.活菌比例最低時，短桿形菌比例升高而弧形菌比例幾乎降至為零，長桿形菌和球形菌比例變化不大，說明配水管網(wǎng)水中的短桿形菌對次氯酸鈉消毒劑的耐受能力最強(qiáng).另外，余氯對于細(xì)菌的滅活相對于余氯衰減存在時間上的滯后性，即余氯濃度最大時，活菌比例并未達(dá)降至最低，尤其是對于菌膠團(tuán)中細(xì)菌的滅活.隨著余氯衰減，桿形菌比例增長明顯，說明桿形菌的繁殖和活性恢復(fù)能力較強(qiáng).活弧形菌的再次出現(xiàn)說明消毒劑并不能完全殺滅水中的細(xì)菌，而是殺滅一部分細(xì)菌，對另一部分細(xì)菌僅能發(fā)揮抑制活性作用.所以這時雖然水中仍存有一定濃度的余氯，但是已不能有效地控制細(xì)菌的繁殖和活性恢復(fù).
3.2.2 細(xì)菌數(shù)量和整體活性受溫度影響的變化規(guī)律
水溫高時整體細(xì)菌活性較強(qiáng)，因?yàn)樗疁馗哂欣诩?xì)菌的繁殖.而且水溫高時余氯的衰減加快，也相應(yīng)減小了余氯的滅活作用.水溫高時桿形菌比例相對低，說明桿形菌對溫度較高時的消毒劑較敏感，即桿形菌對熱力消毒敏感.根據(jù)地下水和地表水的水溫特點(diǎn)，由以上分析可知，夏季的地表水更有利于細(xì)菌的生長繁殖和活性恢復(fù)，所以采用地表水水源的水廠在夏季更應(yīng)關(guān)注微生物學(xué)指標(biāo).
3.2.3 細(xì)菌數(shù)量和整體活性受濁度影響的變化規(guī)律
水中的微生物會附著在懸浮顆粒上呈離散的非溶解狀態(tài)，這些懸浮顆粒給微生物的生長繁殖提供了保護(hù).所以美國在2002年把濁度列入了微生物學(xué)指標(biāo)，指標(biāo)限值也更為嚴(yán)格.由試驗(yàn)結(jié)果可知配水管網(wǎng)水中的濁度大則細(xì)菌數(shù)量多，整體細(xì)菌活性也強(qiáng)，說明活菌受到了懸浮顆粒包裹物的保護(hù).實(shí)測的濁度與活菌數(shù)之間的相關(guān)系數(shù)高達(dá)0.979 8，即微生物繁殖和復(fù)活在一定程度上也取決于濁度的高低.因此，控制出廠水及配水管網(wǎng)中的濁度水平，對于控制活菌數(shù)也是有效措施.
3.2.4 細(xì)菌數(shù)量和整體活性受流速影響的變化規(guī)律
當(dāng)流速大時由于水力剪切作用，附著在管壁上的生物膜會被水流沖刷下來，并隨著水流流向管網(wǎng)下游，造成細(xì)菌數(shù)量的激增.并且這些生物膜給細(xì)菌的生長繁殖和避開滅活提供了保護(hù).流速的增大使得從管壁上沖刷下更多的生物膜，引起了水中細(xì)菌數(shù)量的增多，尤其是活菌數(shù)量的增幅更大，導(dǎo)致水中整體細(xì)菌活性增強(qiáng).因此，盡量避免管網(wǎng)中流速突然增大，也是控制飲用水中細(xì)菌數(shù)量激增的有效措施.
3.3 吖啶橙染色熒光顯微鏡直接鏡檢法需要注意的問題
吖啶橙不但可以將水中的微生物染色，還可將部分雜質(zhì)染色，因此鏡檢觀察時應(yīng)只計(jì)數(shù)細(xì)胞形態(tài)的熒光物.水樣要充分過濾，否則殘留在膜上的水痕會干擾觀察.觀察計(jì)數(shù)每個視野前應(yīng)使部分干擾物的熒光淬滅.具體參見污水寶商城資料或http://wlmqsb.com更多相關(guān)技術(shù)文檔。
4 結(jié)論
(1) 吖啶橙染色熒光顯微鏡直接鏡檢應(yīng)用于計(jì)數(shù)模擬配水管網(wǎng)中的微生物數(shù)量能夠得到較穩(wěn)定的結(jié)果.計(jì)數(shù)得到水樣中的活菌數(shù)在103~104cells·mL-1，比使用R2A作為培養(yǎng)基的平板計(jì)數(shù)法高出1~3個量級;水樣中的細(xì)菌總數(shù)在104~105cells·mL-1.每個水樣的鏡檢時間僅需30 min左右.所以吖啶橙染色熒光顯微鏡直接鏡檢是對配水管網(wǎng)中細(xì)菌進(jìn)行計(jì)數(shù)的較優(yōu)方法.
(2) 模擬配水管網(wǎng)水中整體細(xì)菌活性與水溫、濁度和流速都存在正相關(guān)關(guān)系;與運(yùn)行穩(wěn)定后的余氯存在負(fù)相關(guān)關(guān)系.可根據(jù)細(xì)菌活性確定不同季節(jié)和原水水質(zhì)下的更準(zhǔn)確的投氯量.
(3) 模擬配水管網(wǎng)水中常見形態(tài)的細(xì)菌對次氯酸鈉消毒劑的耐受能力依次為：短桿形菌>球形菌>長桿形菌>弧形菌，并且桿形菌恢復(fù)活性和再繁殖的能力較強(qiáng).夏季水樣中短桿形菌多于冬季.
