1 引言(Introduction)

　　水是人類賴以生存的自然資源, 也是人類生態(tài)環(huán)境的重要組成部分, 水質(zhì)的優(yōu)劣直接影響到人類的生活質(zhì)量、生產(chǎn)及身體健康, 但隨著經(jīng)濟(jì)的高速發(fā)展, 水體污染日益嚴(yán)重.造成水體污染的主要物質(zhì)有重金屬離子、農(nóng)藥、過(guò)量的N、P和致病微生物等.重金屬是具有潛在危害的重要污染物質(zhì), 水中重金屬污染主要來(lái)自采礦業(yè)、冶金、機(jī)械加工、重工業(yè)及農(nóng)藥和化肥中重金屬的殘留.因?yàn)橹亟饘僭谧匀唤缰胁蝗菀妆簧�物降�? 且可通過(guò)食物鏈在生物體內(nèi)富集, 從而對(duì)生物體構(gòu)成嚴(yán)重威脅(支田田等, 2011).因此, 重金屬污染水體的修復(fù)技術(shù)一直是全球水處理領(lǐng)域的研究熱門.

　　目前比較受關(guān)注的廢水中有毒重金屬主要為鉛、鎘、鉻、鋅、鎳(Ahn et al., 2009;Rajfur et al., 2010).例如, 人們熟知的“水俁病”、“痛痛病”均是由重金屬引起的.傳統(tǒng)的工業(yè)重金屬?gòu)U水處理方法包括化學(xué)沉淀、電解法、離子交換、反滲透、活性炭吸附等(孟祥和, 2000).其弊端是在處理低濃度廢水時(shí), 效率較低而能耗較高, 使用后的材料需要經(jīng)填埋或燃燒處理, 可能產(chǎn)生二次污染.生物吸附技術(shù)因具有吸附劑價(jià)廉易得、吸附量大、選擇性好、操作條件范圍寬、金屬可回收再利用等特點(diǎn)而受到廣泛關(guān)注.常見(jiàn)的生物吸附材料主要包括藻類、細(xì)菌與真菌.藻類對(duì)許多重金屬具有較強(qiáng)的富集能力, 尤其是對(duì)于含量較低或傳統(tǒng)方法不易于去除的重金屬具有很好的處理效果, 是一種具有經(jīng)濟(jì)價(jià)值及發(fā)展前途的工業(yè)重金屬污水凈化材料.另一方面, 藻類具有光合作用的能力, 藻類在培養(yǎng)收獲時(shí)對(duì)二氧化碳的減排也具有重要意義, 這使其相較于其它類型的生物吸附劑具有一定的優(yōu)勢(shì).

　　目前, 國(guó)內(nèi)外針對(duì)淡水微藻與大型海洋藻類應(yīng)用于重金屬?gòu)U水處理方面展開(kāi)了大量研究.Tsezos等(1981)通過(guò)對(duì)比死亡海藻細(xì)胞和活體海藻細(xì)胞對(duì)重金屬的吸附能力, 證實(shí)死亡海藻細(xì)胞具有更佳的吸附性能, 更適用于吸附和處理含有重金屬的實(shí)際污水.死亡的海藻細(xì)胞是通過(guò)物理-化學(xué)途徑富集重金屬, 其中, 細(xì)胞中的蛋白質(zhì)與多糖起到重要作用(Trujillo, 1991;Sar et al., 1999;Ting et al., 1989).死亡海藻細(xì)胞壁受到破壞后, 可暴露出更多的內(nèi)部官能團(tuán), 從而使生物吸附的能力得到顯著提高(張永亮等, 2009).在對(duì)藻類吸附重金屬離子的機(jī)理研究中, 藻多糖被認(rèn)為是主要的活性吸附物質(zhì).鄧?yán)蚱嫉?2008)通過(guò)對(duì)馬尾藻(Sargassum sp.)藻酸鹽多聚糖的提取、純化, 發(fā)現(xiàn)影響重金屬吸附的主要因素是藻酸鹽的含量和組成, 糖醛酸殘基起主要作用(鄧?yán)蚱? 2008).Chojnacka等(2005)通過(guò)對(duì)不同藻類的吸附研究發(fā)現(xiàn), 當(dāng)把細(xì)胞壁中的羧基脂化后或細(xì)胞表面的主要官能團(tuán)被修飾后, 該藻即失去了對(duì)重金屬的吸附能力.李建宏等(1998)在對(duì)極大螺旋藻富集重金屬的機(jī)理研究中發(fā)現(xiàn), 多糖的吸附量為藻體的8倍左右, 認(rèn)為藻細(xì)胞中多糖對(duì)重金屬離子的吸附起主要作用.趙玲等(2001)研究發(fā)現(xiàn), 從海洋原甲藻(Prarocentrum micans)分離出的多糖對(duì)金屬的吸附量是藻體的5倍, 其中, —OH和—CONH2是吸附的活性中心.藻類對(duì)重金屬離子的生物吸附是一個(gè)復(fù)雜的物化與生化過(guò)程, 是多種機(jī)理協(xié)同作用的結(jié)果.前期研究結(jié)果顯示, 海洋硅藻是一類對(duì)重金屬離子具有高吸附性能的生物吸附劑, 優(yōu)于其他類型藻類(褐藻、綠藻), 而其中的有效吸附組分尚未見(jiàn)相關(guān)報(bào)道.因此, 從海洋硅藻提取粗多糖并考察其對(duì)重金屬的吸附性能, 對(duì)于揭示其吸附機(jī)理和開(kāi)發(fā)新型高效吸附劑具有重要意義.前期研究顯示, 堿法提取的粗多糖得率明顯高于其他物理化學(xué)法(酸法、超聲法、熱水法)(陳利華等, 2018);陳曉清等(2005)、王長(zhǎng)海等(1999)采用40 mg·mL-1 NaOH為提取溶液(不同堿濃度會(huì)影響溶液pH值, 從而影響多糖得率), 從小球藻及紫球藻中獲得了較多的粗多糖樣品.基于此, 本文利用濃堿法(40 mg·mL-1 NaOH)輔助凍融、加熱方法對(duì)混合海洋硅藻的粗多糖得率、粗多糖總糖、蛋白質(zhì)及硫酸基含量進(jìn)行比較, 篩選出最優(yōu)的提取方法, 以此方法提取的粗多糖為生物吸附劑, 對(duì)Pb2+吸附特性和吸附動(dòng)力學(xué)進(jìn)行分析.

　　2 材料與方法(Materials and methods)2.1 試劑與儀器

　　實(shí)驗(yàn)試劑：無(wú)水乙醇、氫氧化鈉(粒)、無(wú)水葡萄糖、苯酚、硫酸鉀、氯化鋇、明膠、三氯乙酸、濃鹽酸、濃硫酸均為分析純;Pb2+儲(chǔ)備液溶液(1 mg·mL-1)是將其硝酸鹽溶于去離子水中配得, 其它濃度則由儲(chǔ)備液稀釋配得.其他需要配制試劑包括：1 mol·L-1 HCl、0.5%明膠、1%氯化鋇-明膠、3%三氯乙酸.

　　實(shí)驗(yàn)用到的混合海洋硅藻藻粉是從深圳大鵬新區(qū)海洋微藻培養(yǎng)基地露天培養(yǎng)獲得, 其中, 約80%(細(xì)胞數(shù)比例)為角毛藻, 其余20%由舟形藻、菱形藻、海鏈藻及繭形藻組成.

　　實(shí)驗(yàn)儀器：電熱鼓風(fēng)干燥箱(DHG-9140A)、電子分析天平(AL104/01)、離心機(jī)(Centrifuge5810R)、智能恒溫水浴鍋(SCG-4)、超聲波細(xì)胞粉碎機(jī)、紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)、pH計(jì)(Startorius PB-10)、臺(tái)式冷凍干燥機(jī)、紅外消化爐、電感偶合等離子體發(fā)射光譜儀(ICP).

　　2.2 試驗(yàn)方法2.2.1 樣品預(yù)處理

　　將海洋硅藻粉研磨過(guò)325目篩, 得到均勻粉末, 作為后續(xù)實(shí)驗(yàn)的藻類來(lái)源.

　　2.2.2 粗多糖提取

　　利用40 mg·mL-1 NaOH作為提取液, 輔助凍融或加熱法從硅藻干粉中提取粗多糖.具體處理分為：①濃堿處理：將硅藻干粉置于40 mg·mL-1 NaOH溶液中, 充分反應(yīng)后, 離心得到上清液;②濃堿-凍融處理：將硅藻干粉置于40 mg·mL-1 NaOH溶液中, 充分反應(yīng)后反復(fù)凍融3次, 離心取上清液;③濃堿-凍融-90 ℃處理：將硅藻干粉置于40 mg·mL-1 NaOH溶液中, 反復(fù)凍融3次, 離心, 分別收集上清液與沉淀, 然后將沉淀置于沸水浴中加熱3 h, 離心, 將兩次得到的上清液混合.

　　每種方法的料液比均為1:30 (g:mL)、反應(yīng)4 h(Davis et al., 2003;Yun et al., 2003;Raize et al., 2004), 在4000 r·min-1下離心20 min, 得到的上清液加熱濃縮至原體積的1/4, 去除溶液中的蛋白質(zhì), 采用乙醇分級(jí)沉淀提純法, 考察其在3種提取過(guò)程中對(duì)粗多糖得率的影響.以此前的上清液加熱濃縮后的液體體積為基準(zhǔn), 設(shè)定乙醇體積為0.4、1、2、3、4和5倍.沉淀后的物質(zhì)冷凍干燥得到粗多糖干粉為淡綠色粉末(含有大量的色素和小分子雜質(zhì)).

　　2.2.3 粗多糖組成成分分析

　　蒽酮-硫酸顯色反應(yīng)：糖類物質(zhì)遇到濃硫酸脫水生成糠醛或其衍生物, 可與蒽酮試劑縮合產(chǎn)生藍(lán)綠色物質(zhì)(Sheng et al., 2004), 將蒽酮-硫酸試劑加入到粗多糖溶液中, 溶液呈藍(lán)綠色, 證明提取到的為多糖類物質(zhì).

　　總糖含量測(cè)定：采用硫酸-苯酚法測(cè)定樣品的總糖含量, 分別在480、490 nm兩個(gè)波長(zhǎng)測(cè)定吸光度, 以葡萄糖質(zhì)量為橫坐標(biāo), 吸光度為縱坐標(biāo), 繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線, 根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線及換算因子計(jì)算樣品總糖含量(Chojnacka et al., 2005).

　　蛋白質(zhì)含量測(cè)定：采用凱氏定氮法測(cè)蛋白質(zhì)含量, 粗多糖樣品與濃硫酸和催化劑(K2SO4、CuSO4·5H2O)一同加入消解管內(nèi)加熱消化, 使蛋白質(zhì)分解, 樣品中的有機(jī)氮轉(zhuǎn)化為氨與硫酸結(jié)合成硫酸銨.將消化液轉(zhuǎn)入凱氏定氮反應(yīng)器內(nèi), 0.1 mol·L-1鹽酸吸收后用已經(jīng)標(biāo)定過(guò)的氫氧化鈉溶液進(jìn)行滴定.

　　硫酸基含量測(cè)定：采用硫酸鋇比濁法測(cè)定硅藻多糖中硫酸基含量(宮春宇等, 2009), 以硫酸基質(zhì)量(mg)為橫坐標(biāo), 縱坐標(biāo)為吸光度(A1-A2, 在360 nm處測(cè)定吸光度), 根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線及換算因子計(jì)算硫酸基含量.

　　2.2.4 吸附試驗(yàn)

　　配制一系列不同濃度的Pb2+溶液, 25 ℃恒溫下振蕩(180 r·min-1), 使體系達(dá)到平衡, 取樣時(shí)將反應(yīng)液在4000 r·min-1條件下離心5 min, 用0.22 μm濾膜過(guò)濾, 稀釋到指定濃度后, 用ICP測(cè)定其金屬離子濃度.

　　pH對(duì)吸附的影響：配制一系列1 mg·mL-1的Pb2+溶液, 各取10 mL加入到裝有0.005 g粗多糖的10 mL離心管中.試驗(yàn)過(guò)程中保持pH恒定及吸附穩(wěn)定, 用0.1 mol·L-1 HNO3或0.1 mol·L-1 NaOH調(diào)節(jié)溶液pH使其在2.0~10.0之間, 吸附條件為：溫度25 ℃, 轉(zhuǎn)速180 r·min-1, 吸附時(shí)間24 h.

　　溫度對(duì)吸附的影響：配制一系列1 mg·mL-1的Pb2+溶液, 各取10 mL加入到裝有0.01 g粗多糖的10 mL離心管中.吸附條件為：轉(zhuǎn)速180 r·min-1, 吸附pH為原溶液初始值, 調(diào)節(jié)溫度為15、25、35 ℃, 吸附24 h后測(cè)定Pb2+濃度.

　　轉(zhuǎn)速對(duì)吸附的影響：配制一系列1 mg·mL-1的Pb2+溶液, 各取10 mL加入到裝有0.01 g粗多糖的10 mL離心管中.吸附條件為：溫度25 ℃, 吸附pH為原溶液初始值, 調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)速為50、100、150、180 r·min-1, 吸附24 h后測(cè)定Pb2+濃度.

　　共存離子的影響：配制一系列0.6 mg·mL-1的Cd2+、Pb2+、Cu2+、Ni2+溶液, 各取10 mL加入到裝有0.01 g粗多糖的10 mL離心管中.吸附條件為：溫度25 ℃, 吸附pH為原溶液初始值, 調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)速為180 r·min-1, 吸附24 h后測(cè)定其值.

　　2.2.5 等溫吸附試驗(yàn)

　　分別配置一系列一定濃度梯度的Pb2+溶液, 各取50 mL加入到裝有0.01 g粗多糖的50 mL離心管中.吸附條件為：溫度25 ℃, 轉(zhuǎn)速180 r·min-1, 吸附時(shí)間24 h, 吸附pH為原溶液初始值.吸附完畢后, 離心靜置, 吸取一定體積的上清液透過(guò)0.22 μm膜, ICP檢測(cè)吸附前后溶液濃度.

　　2.2.6 粗多糖有效吸附組分對(duì)吸附影響

　　提取粗多糖過(guò)程中, 在3倍無(wú)水乙醇沉淀之前, 向藻水混合液中添加三氯乙酸或透過(guò)截留分子量為6 kD的半透膜, 去除混合液中殘留的蛋白質(zhì)等雜質(zhì)或小分子雜質(zhì), 再進(jìn)行濃縮、沉淀后獲得粗多糖樣品, 進(jìn)行Pb2+吸附試驗(yàn).

　　2.2.7 數(shù)據(jù)分析與處理

　　本研究中樣品提取及測(cè)定均設(shè)置2個(gè)平行樣, 采用SPSS 11.5和Excel 2010進(jìn)行數(shù)據(jù)分析和統(tǒng)計(jì)分析, 以p < 0.05為差異顯著, p < 0.01為差異極顯著, 用Origin 8.6軟件繪圖.

　　吸附t時(shí)間后, 吸附劑對(duì)Pb2+的吸附量(qt, mg·g-1)、達(dá)到吸附平衡時(shí)的吸附量(qe, mg·g-1)的計(jì)算公式如下所示：

(1) (2)

　　式中, C0、Ct、Ce分別為初始時(shí)刻、吸附時(shí)間為t、吸附平衡時(shí)的吸附量(mg·g-1), V為溶液體積(L), W為吸附劑的質(zhì)量(g).

　　金屬離子去除率(RE)是指吸附前后目標(biāo)金屬離子濃度差與初始濃度的比值, 其計(jì)算公式如下所示：

(3)

　　式中, C0為金屬溶液的初始濃度(mg·L-1), C為吸附后金屬溶液的濃度(mg·L-1).

　　3 結(jié)果與討論(Results and discussion)3.1 不同提取方法的粗多糖得率

　　粗多糖得率η為提取得到的粗多糖干粉質(zhì)量(m粗多糖)相對(duì)硅藻干粉質(zhì)量(m硅藻)的百分比, 即：

(4)

　　利用濃堿法(40 mg·mL-1 NaOH)進(jìn)行提取, 隨乙醇體積的增加粗多糖得率變化趨勢(shì)顯著(p < 0.05), 尤其以濃堿-凍融-90 ℃提取方法的粗多糖得率變化趨勢(shì)極顯著(p < 0.01).在3倍無(wú)水乙醇體積沉淀下得到的粗多糖得率最高, 濃堿法、濃堿-凍融、濃堿-凍融-90 ℃處理下的粗多糖得率分別為28.44%、33.14%、44.40%.結(jié)果表明, 濃堿輔助凍融法可提高粗多糖得率.這是由于凍融、熱提法可進(jìn)一步破壞硅藻細(xì)胞壁的納米硅質(zhì)結(jié)構(gòu), 從而提高硅藻粗多糖得率(張新宇等, 2000;徐錫蓮等, 2007).提取的樣品為粗多糖, 其中含有核酸、蛋白質(zhì)、色素、低聚寡糖等小分子和無(wú)機(jī)鹽等雜質(zhì).

　　圖 1

　　圖 1不同方法的粗多糖得率比較

　　3.2 粗多糖成分分析

　　采用硫酸-苯酚法測(cè)定粗多糖樣品中總糖含量(Haysahi et al., 1996), 粗多糖樣品分別配制成0.1 mg·mL-1溶液, 其中, 己糖在490 nm、戊糖及糖醛酸在480 nm處有最大吸收(劉艷等, 2007).測(cè)定結(jié)果如圖 2a所示, 待測(cè)樣品中戊糖及糖醛酸含量要高于己糖含量.總糖含量大小順序?yàn)椋簼鈮A-凍融>濃堿-凍融-90 ℃>濃堿法, 其中, 濃堿-凍融法得到的粗多糖總糖含量分別為31.65%(480 nm)和27.27%(490 nm).結(jié)果表明, 添加額外的化學(xué)試劑在一定程度上會(huì)降低粗多糖的純度.濃堿-凍融方法下粗多糖卻保持了較高的多糖含量, 這有可能是由于凍融促進(jìn)了硅藻胞內(nèi)多糖的溶出, 間接提高了粗多糖的多糖含量.

　　圖 2

　　圖 2不同方法提取的粗多糖成分比較 (a.粗多糖組分, b.單位質(zhì)量生物質(zhì)(藻粉)的粗多糖組分)

　　采用凱氏定氮法測(cè)定硅藻干粉的蛋白質(zhì)含量為14.40%, 說(shuō)明硅藻干粉中含有一定量的蛋白質(zhì).如圖 2a所示, 所有粗多糖樣品均檢測(cè)到蛋白質(zhì), 含量依次為3.89%、6.44%、6.14%, 與總糖含量的變化趨勢(shì)相似, 即濃堿-凍融>濃堿-凍融-90 ℃>濃堿法.表明樣品中除含有糖類以外, 還含有像蛋白質(zhì)或肽類等其他物質(zhì).

　　硫酸多糖(Sulfated polysaccharide)為多糖的硫酸化衍生物, 是一類多功能活性物質(zhì)(Groth et al., 2001;鄧成華等, 2000;Mei et al., 2002).如圖 2a所示, 濃堿法、濃堿-凍融、濃堿-凍融-90 ℃處理的粗多糖硫酸基含量分別為0.97%、3.23%、1.90%.這是由于在堿性條件下硫酸基容易生成3, 6-內(nèi)醚衍生物或發(fā)生Walden轉(zhuǎn)化, 導(dǎo)致硫酸基脫落(Groth et al., 2001;高亞輝, 2001;Armbrust, 2009).

　　綜合粗多糖得率與單位質(zhì)量粗多糖的成分結(jié)果計(jì)算出單位質(zhì)量藻粉提取出的物質(zhì)組成成分, 結(jié)果如圖 2b所示.結(jié)果表明, 濃堿-凍融法的單位質(zhì)量硅藻干粉中提取的總糖含量和硫酸基多糖含量較高, 相比于其它方法具有優(yōu)勢(shì).

　　3.3 吸附特性研究3.3.1 不同提取方法

　　不同提取方法得到的粗多糖含有的官能團(tuán)有差異, 提供孤對(duì)電子與金屬離子絡(luò)合或離子交換的可能性不同, 而且粗多糖中雜質(zhì)亦可能不同.本研究比較了濃堿-凍融、濃堿法及濃堿-凍融-90 ℃ 3種方法對(duì)Pb2+的吸附性能, 結(jié)果如圖 3所示.由圖可知, 濃堿-凍融、濃堿法兩種提取方法得到的粗多糖樣品對(duì)Pb2+的吸附量明顯高于濃堿-凍融-90℃方法, 在初始Pb2+溶液濃度為1 mg·mL-1時(shí), 濃堿-凍融法對(duì)Pb2+的去除率達(dá)到98.34%, 接近100%, 其吸附量為983.35 mg·g-1.這表明加熱反應(yīng)可能破壞了多糖表面的某些官能團(tuán), 降低了對(duì)Pb2+的吸附.同時(shí), 凍融與否對(duì)于粗多糖吸附Pb2+無(wú)明顯影響.因此, 綜合考慮粗多糖得率及對(duì)Pb2+的吸附效果, 利用濃堿-凍融法提取得到的粗多糖樣品進(jìn)行Pb2+吸附試驗(yàn).

　　圖 3

　　圖 3不同方法提取的粗多糖對(duì)Pb2+吸附量隨時(shí)間的變化

　　在同一種提取方法下, 不同的乙醇體積沉淀所獲得的粗多糖不同.圖 4顯示了濃堿-凍融法在不同倍體積無(wú)水乙醇沉淀下獲得的粗多糖對(duì)Pb2+的吸附結(jié)果.由圖可知, 反應(yīng)迅速達(dá)到吸附平衡, 在初始Pb2+濃度為0.6 mg·mL-1時(shí), 3倍乙醇沉淀后對(duì)Pb2+的吸附量達(dá)到最大, 為591.36 mg·g-1, 去除率為98.56%, 接近100%.因此, 利用濃堿法-凍融法3倍乙醇沉淀后得到的粗多糖樣品進(jìn)行后續(xù)的吸附試驗(yàn).

　　圖 4

　　圖 4濃堿-凍融法提取的粗多糖對(duì)Pb2+吸附量隨乙醇體積變化

　　3.3.2 粗多糖對(duì)Pb2+吸附的影響因素

　　共存離子：工業(yè)廢水通常是多種離子共存的復(fù)雜體系, 溶液中存在的陽(yáng)離子會(huì)與目標(biāo)重金屬離子競(jìng)爭(zhēng)吸附點(diǎn)位, 對(duì)吸附產(chǎn)生干擾, 影響生物吸附劑對(duì)重金屬的吸附能力.本文利用粗多糖樣品對(duì)Cd2+、Pb2+、Cu2+、Ni2+4種重金屬進(jìn)行吸附實(shí)驗(yàn), 6 mg·mL-1 Cd2+、Pb2+ Cu2+和Ni2+混合溶液中Pb2+吸附量隨時(shí)間的變化如圖 5a所示.當(dāng)以質(zhì)量濃度為單位反映吸附量時(shí), 其吸附順序?yàn)椋篊d2+>Cu2+>Pb2+>Ni2+.因?yàn)榉肿恿坎煌? 僅以質(zhì)量濃度難以反映出分子結(jié)合的相對(duì)能力.以物質(zhì)的量濃度為單位對(duì)吸附率進(jìn)行評(píng)價(jià), 粗多糖對(duì)這4種重金屬離子的吸附能力順序?yàn)椋篘i2+> Cu2+>Cd2+ >Pb2+.這說(shuō)明同時(shí)存在幾種金屬離子的情況下, 粗多糖對(duì)Pb2+仍具備一定的吸附性能, 且對(duì)不同重金屬離子的吸附能力不同.不同重金屬離子之間吸附容量存在差異主要是由重金屬離子的不同性質(zhì)(電負(fù)性、共價(jià)指數(shù)、原子質(zhì)量、原子數(shù)、有效核電荷等)所導(dǎo)致.具體聯(lián)系污水寶或參見(jiàn)http://wlmqsb.com更多相關(guān)技術(shù)文檔

　　圖 5

　　圖 5不同因子對(duì)粗多糖的Pb2+吸附性能影響 (a.共存Cd2+、Pb2+、Cu2+和Ni2+, b.溫度, c.轉(zhuǎn)速, d.pH, e.吸附時(shí)間)

　　另外, 在Pb2+和Cd2+分別單獨(dú)存在于溶液中時(shí), Pb2+的吸附效果要高于Cd2+(鄧?yán)蚱? 2008), 當(dāng)多種離子共存時(shí), Cd2+的吸附效果要高于Pb2+, 這可能是由于粗多糖細(xì)胞壁表面的吸附官能團(tuán)更容易與Cd2+結(jié)合, 在一定程度上也阻礙了其與Pb2+結(jié)合.

 　　溫度：溫度主要通過(guò)影響吸附劑細(xì)胞表面的化學(xué)結(jié)構(gòu)和溶液的物理化學(xué)狀態(tài)對(duì)吸附容量產(chǎn)生影響.對(duì)不同的生物吸附劑, 溫度對(duì)金屬離子吸附量的影響有所不同.粗多糖樣品對(duì)Pb2+的吸附量隨溫度變化曲線如圖 5b所示.隨著溫度的升高, 粗多糖對(duì)Pb2+的吸附量變化顯著, Pb2+在25 ℃時(shí)吸附效率最高, 但隨著溫度的進(jìn)一步升高, 其對(duì)Pb2+的去除率無(wú)明顯上升且發(fā)生輕微下降.

　　轉(zhuǎn)速：搖床轉(zhuǎn)速對(duì)Pb2+吸附速率的影響如圖 5c所示.隨著轉(zhuǎn)速加快, 金屬離子在吸附劑中的擴(kuò)散加快, 增大了與吸附劑表面積的接觸吸附基團(tuán), 有利于吸附反應(yīng)的進(jìn)行, 達(dá)到吸附平衡的時(shí)間越短.

　　pH：溶液pH值是影響生物吸附的重要因素, 它不僅會(huì)影響重金屬離子的水化學(xué)性質(zhì)、金屬的水解、與有機(jī)/無(wú)機(jī)基團(tuán)絡(luò)合、氧化還原電位、沉淀等, 還會(huì)影響吸附劑表面的質(zhì)子化程度, 從而影響吸附劑對(duì)重金屬的吸附(Esposito et al., 2002;Huang et al., 1990;Matheickal et al., 1999;Sánchez et al., 1999).粗多糖樣品對(duì)Pb2+吸附量隨pH的變化如圖 5d所示.pH≈2時(shí), 粗多糖對(duì)Pb2+的吸附量較低;隨pH的增加, 吸附量逐漸增大;pH=4時(shí), 粗多糖對(duì)Pb2+的吸附量最大, 對(duì)Pb2+的去除率達(dá)到86.15%.pH太高又會(huì)導(dǎo)致重金屬離子部分水解沉淀, 當(dāng)pH=8時(shí), Pb2+的反應(yīng)溶液開(kāi)始出現(xiàn)白色絮狀沉淀, 反應(yīng)溶液渾濁.因此, 高pH條件下, Pb2+大量被吸附是由粗多糖及溶液中大量的氫氧根兩者共同作用導(dǎo)致的.

　　當(dāng)pH較低時(shí), 硅藻細(xì)胞壁中的雜多糖中的一些氨基、羧基硫酸基團(tuán)被質(zhì)子化(Andrade et al., 2005), 阻礙了Pb2+向細(xì)胞壁的靠近, pH值越低其阻力越大, 因此, 對(duì)Pb2+的吸附量越低.隨著pH值升高, 溶液中出現(xiàn)更多的吸附基團(tuán), 吸附劑表面帶負(fù)電, 有利于Pb2+的接近并吸附在細(xì)胞表面上(Dönmez et al., 1999;Aksu, 2001).pH對(duì)吸附的影響可進(jìn)一步解釋為H3O+與重金屬離子之間的競(jìng)爭(zhēng)吸附作用, 在pH較低時(shí), H3O+占據(jù)了細(xì)胞表面的吸附位點(diǎn), 隨pH的升高, H3O+吸附位點(diǎn)的能力降低, 帶正電荷的重金屬會(huì)占據(jù)細(xì)胞表面的吸附位點(diǎn), 因此, 吸附重金屬的能力增加.當(dāng)pH值過(guò)高, 金屬離子在水中被各種陰離子包圍, 形成負(fù)電基團(tuán), 不易被吸附.當(dāng)溶液pH值超過(guò)金屬離子微沉淀的上限時(shí), 在溶液中的大量金屬離子會(huì)以氫氧化物微粒的形式存在, 從而吸附過(guò)程無(wú)法進(jìn)行.微藻類粗多糖吸附重金屬的最佳pH范圍通常在4~5之間(Feng et al., 2004).

　　吸附時(shí)間：吸附時(shí)間是影響重金屬吸附效率的重要因素.很多研究表明, 生物吸附在最初的30 min內(nèi)速率很快(Singh et al., 2010;秦捷等, 2011), 可達(dá)到總吸附量的90%以上, 30 min后速率減慢.通常情況下, 生物吸附需要2~4 h或更長(zhǎng)的時(shí)間才能達(dá)到理想的效果(Armbrust, 2009).圖 5e給出了粗多糖在初始濃度為400 mg·L-1時(shí)對(duì)Pb2+的吸附量隨吸附時(shí)間的變化曲線.從圖中可以看出, 吸附過(guò)程經(jīng)歷了快吸附和慢吸附兩個(gè)階段.Pb2+在被吸附的前30 min內(nèi), 吸附量迅速增大, 說(shuō)明吸附進(jìn)行得很快;隨后吸附速率在2 h之后趨于平緩.由此可見(jiàn), 粗多糖對(duì)Pb2+的吸附是一個(gè)動(dòng)態(tài)過(guò)程.快速吸附階段主要是離子交換和表面絡(luò)合作用, 如粗多糖含有的氨基和羧基與金屬發(fā)生配位絡(luò)合作用;慢速吸附階段主要是由于傳輸和沉淀作用.為保證吸附體系充分達(dá)到平衡, 本研究將吸附振蕩時(shí)間設(shè)置為24 h.

　　3.3.3 吸附動(dòng)力學(xué)分析

　　偽一級(jí)動(dòng)力模型(式(5))與偽二級(jí)動(dòng)力模型(式(6))是兩種常用的吸附動(dòng)力學(xué)模型(Singh et al., 2010).偽一級(jí)動(dòng)力模型假設(shè)吸附位點(diǎn)的占據(jù)速率與未被占據(jù)的吸附位點(diǎn)的數(shù)量成正比, 偽二級(jí)動(dòng)力模型假設(shè)吸附位點(diǎn)的占據(jù)速率與未被占據(jù)的吸附位點(diǎn)的數(shù)量的平方成正比.

(5) (6)

　　式中, qe、qt分別為吸附平衡及t時(shí)刻的吸附量(mg·g-1);t為吸附時(shí)間(min);K1為偽一級(jí)吸附速率常數(shù)(min-1);K2為偽二級(jí)吸附速率常數(shù)(g·mg-1·min-1).

　　將ln (qe-qt)對(duì)t和t/qt對(duì)t數(shù)據(jù)點(diǎn)分別采用偽一級(jí)吸附模型和偽二級(jí)吸附模型進(jìn)行線性擬合, 結(jié)果見(jiàn)圖 6和表 2.根據(jù)偽二級(jí)動(dòng)力學(xué)模型計(jì)算的Pb2+平衡吸附容量更接近實(shí)驗(yàn)值, 說(shuō)明偽二級(jí)動(dòng)力模型更適于描述本研究中硅藻粗多糖對(duì)Pb2+的吸附動(dòng)力學(xué)過(guò)程.

　　圖 6

　　圖 6粗多糖吸附Pb2+的偽一級(jí)(a)、二級(jí)(b)動(dòng)力學(xué)模型擬合

 　　3.3.4 吸附等溫分析

　　初始濃度可以提供金屬離子克服水溶液與固體物質(zhì)傳質(zhì)阻力的動(dòng)力, 因此, 初始濃度對(duì)吸附具有一定的影響.實(shí)驗(yàn)中分別設(shè)置Pb2+初始濃度為100、200、400、800、1000 mg·L-1, 考察不同的反應(yīng)初始濃度對(duì)溶液中Pb2+吸附的影響, 結(jié)果如圖 7所示.在相同反應(yīng)條件下, 隨Pb2+初始濃度的增大, 粗多糖對(duì)Pb2+的吸附量逐漸增大, 當(dāng)初始濃度為400 mg·L-1時(shí)達(dá)到最大值, 但去除率逐漸降低(Ofer et al., 2003).由于投加相同量的粗多糖, Pb2+初始濃度越大, 與吸附劑接觸的機(jī)率越大, 吸附劑對(duì)Pb2+的吸附量就越大.當(dāng)初始濃度升高至一定濃度時(shí), 吸附量不再發(fā)生明顯變化, 這是由于吸附劑表面已接近吸附飽和狀態(tài).

　　圖 7

　　圖 7不同初始濃度下粗多糖對(duì)Pb2+吸附量的影響

　　常見(jiàn)的吸附等溫模型為L(zhǎng)angmuir等溫式和Freundlich等溫式, 其線性表達(dá)式分別為：

(7) (8)

　　式中, qm為最大吸附容量(mg·g-1);b為L(zhǎng)angmuir的吸附平衡常數(shù), 可用于判別吸附過(guò)程的難易程度;Ce為達(dá)到吸附平衡時(shí)溶液中的吸附質(zhì)濃度(mg·L-1);qe為對(duì)應(yīng)于平衡濃度Ce時(shí)的吸附量(mg·g-1);KF為Freundlich常數(shù);n為經(jīng)驗(yàn)常數(shù), 一般來(lái)說(shuō), n值大于1, 當(dāng)n值介于2~10之間時(shí)表示吸附反應(yīng)容易進(jìn)行.

　　由2個(gè)方程的擬合結(jié)果可以看出, 2個(gè)方程擬合的效果均不理想, 但Langmuir等溫吸附模型比Freundlich等溫吸附模型擬合的可決系數(shù)高, 即用Langmuir方程模擬的效果較好, 表明粗多糖對(duì)Pb2+吸附為單層吸附.

　　本研究對(duì)采用濃堿-凍融方法從混合海洋硅藻中提取的粗多糖對(duì)Pb2+的吸附能力與其他藻類吸附劑對(duì)Pb2+的吸附能力進(jìn)行了比較, 結(jié)果如表 4所示.

　　圖 8

　　圖 8粗多糖吸附Pb2+的Langmuir(a)、Freundlich (b)吸附等溫線

表 3 混合藻硅藻粗多糖對(duì)Pb2+吸附的Langmuir、Freundlich等溫吸附模型系數(shù)

 

 　　表 4 各類吸附劑對(duì)Pb2+吸附容量對(duì)比

 結(jié)果表明, 海洋硅藻相比于其它生物吸附劑和海洋大型藻類具更高效的Pb2+吸附性能, 從混合海洋硅藻中提取的粗多糖是關(guān)鍵的吸附活性物質(zhì), 其糖表面有活性基團(tuán), 有較強(qiáng)的電負(fù)性, 與Pb2+發(fā)生表面絡(luò)合、離子交換、靜電吸附等作用.因此, 濃堿-凍融法提取的粗多糖樣品具備作為一種優(yōu)質(zhì)Pb2+吸附劑的潛力.

　　3.3.5 粗多糖中有效吸附組分分析

　　三氯乙酸可去除混合液中絕大部分的蛋白質(zhì)雜質(zhì), 本文考察了去除蛋白質(zhì)和小分子雜質(zhì)前后粗多糖對(duì)Pb2+的吸附性能, 結(jié)果如圖 9所示.結(jié)果表明, 蛋白質(zhì)雜質(zhì)去除與否對(duì)該粗多糖吸附Pb2+不產(chǎn)生明顯影響(圖 9a);而透析后得到的藻水混合液的顏色變淡, 去除絕大部分小分子雜質(zhì)(如植物色素、無(wú)機(jī)離子及糖類)后, 得到的粗多糖樣品對(duì)Pb2+的吸附明顯下降(圖 9b), 對(duì)Pb2+去除率由95.08%下降到21.62%, 但吸附容量仍保持在200 mg·g-1的水平.這說(shuō)明粗多糖中小分子多糖對(duì)Pb2+的吸附具有一定貢獻(xiàn), 但起主要貢獻(xiàn)的是粗多糖樣品中的低聚寡糖等小分子或無(wú)機(jī)鹽雜質(zhì).

　　圖 9

　　圖 9蛋白質(zhì)雜質(zhì)(a)及小分子雜質(zhì)(b)對(duì)Pb2+吸附的影響

　　4 結(jié)論(Conclusions)

　　1) 濃堿(40 mg·mL-1 NaOH)輔助凍融、加熱等提取方法中, 濃堿-凍融法的粗多糖得率為33.14%, 粗多糖含糖量最高, 為31.65%(480 nm)和27.27%(490 nm), 蛋白質(zhì)含量為6.44%, 硫酸基含量為3.23%.

　　2) 以濃堿-凍融法提取的粗多糖為生物吸附劑對(duì)Pb2+的吸附效果最好, 吸附容效果為983.35 mg·g-1, 大大高于海洋硅藻原藻的吸附容量, 這說(shuō)明粗多糖為海洋硅藻中主要的吸附物質(zhì).

　　3) 濃堿-凍融法提取的硅藻粗多糖對(duì)Pb2+的吸附動(dòng)力學(xué)更符合偽二級(jí)動(dòng)力模型, 且用Langmuir方程模擬的效果較好, 說(shuō)明粗多糖對(duì)Pb2+吸附為單層吸附.

　　4) 粗多糖的有效吸附成分分析結(jié)果顯示, 蛋白質(zhì)雜質(zhì)對(duì)Pb2+無(wú)明顯影響, 大分子多糖對(duì)Pb2+吸附有一定貢獻(xiàn), 而起主要作用的是粗多糖中的小分子糖類及無(wú)機(jī)鹽等物質(zhì).

　　5) 濃堿-凍融提取操作簡(jiǎn)單, 且得到的粗多糖樣品對(duì)Pb2+的吸附性能要高于其他的生物吸附劑, 這為后續(xù)的海洋硅藻活性產(chǎn)物的提取、開(kāi)發(fā)及利用提供了一定的理論基礎(chǔ).(來(lái)源：環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào) 作者：陳利華)